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Lignées cellulaires stables intégrées au transposon

Définition

Les éléments transposables (ET), également appelés gènes sauteurs, sont des séquences d'ADN capables de se déplacer d'un emplacement génomique à un autre. Découverts pour la première fois par Barbara McClintock, les ET sont désormais reconnus comme des composants omniprésents des génomes des procaryotes et des eucaryotes. Dans de nombreux organismes, ils constituent une proportion substantielle du génome, par exemple environ 50 % du génome humain et jusqu'à 90 % de celui du maïs.
 

Types de transposons

Les éléments transposables peuvent être divisés en deux catégories en fonction de leur mécanisme de transposition :
1. Éléments transposables de classe I (également appelés rétrotransposons)
2. Éléments transposables de classe II (également appelés transposons d'ADN).
 
Figure 1 : Abondance relative des rétrotransposons et des transposons d'ADN dans les génomes de différents organismes eucaryotes.
 
Cette figure montre le pourcentage d'ADN et de rétrotransposons par rapport au nombre total d'éléments transposables dans chaque espèce. (Sc : Saccharomyces cerevisiae ; Sp : Schizosaccharomyces pombe ; Hs : Homo sapiens ; Mm : Mus musculus ; Os : Oryza sativa ; Ce : Caenorhabditis elegans ; Dm : Drosophila melanogaster ; Ag : Anopheles gambiae (moustique du paludisme) ; Aa : Aedes aegypti (moustique de la fièvre jaune) ; Eh : Entamoeba histolytica ; Ei : Entamoeba envahissant ; Tv : Trichomonas vaginalis.)
 
 

Éléments transposables (TE) de classe I : rétrotransposons

Les transposons de classe I, également appelés rétrotransposons, se transposent via un mécanisme de « copier-coller Ctrl C+V » (Figure 1). Ils se répliquent d’abord sous forme de transcrits d’ARN, qui sont ensuite rétrotranscrits en ADN par une enzyme appelée transcriptase inverse, pour finalement s’insérer dans un nouveau site cible. Ceci est similaire au mécanisme de réplication des rétrovirus tels que le VIH.

Les transposons de classe I ne codent pas pour une transposase. Les TE de classe I sont considérés comme réplicatifs car ils se répliquent à chaque saut. Cela augmente le nombre de copies de TE et, par conséquent, la taille du génome hôte.

Les transposons de classe I sont de deux types : ceux avec de longues répétitions terminales (LTR) et ceux sans (transposons non LTR). Les rétrotransposons LTR ont une structure et un mécanisme de réplication similaires à ceux des rétrovirus. Ils contiennent deux gènes : gag et pol. La polyprotéine pol code pour la transcriptase inverse et l'intégrase nécessaires à la transposition dans les rétrotransposons LTR. Les rétrotransposons non LTR contiennent deux cadres de lecture ouverts (ORF), se terminant généralement par poly(A). ORF2 code pour les activités d'endonucléase et de transcriptase inverse.
 
 
Figure 2 : Aperçu de la transposition de rétrotransposon. 
Les rétrotransposons sont déplacés à l'aide d'un mécanisme de « copier-coller Ctrl C+V ».
 
 

TE de classe II : transposons d'ADN

Les transposons de classe II sont également appelés transposons d'ADN car ils ne nécessitent pas de médiation ARN pour leur mouvement. La plupart des transposons de classe II emploient un mécanisme de transposition non réplicatif « couper-coller Ctrl X+V » : ils s'excisent d'un endroit puis s'insèrent à un autre (Figure 2). Les transposons de classe II ont de longues répétitions terminales (LTR) aux deux extrémités.
 
 
Figure 3 : Aperçu de la transposition du transposon d’ADN.
Pour mobiliser un transposon, une transposase se lie d'abord à la longue répétition terminale (LTR) du transposon, induisant une cassure double brin (DSB) et excisant le transposon de l'ADN du donneur. Cela laisse une empreinte ADN. Lorsque le complexe transposon-transposase trouve son site cible, il s'intègre, créant une duplication du site cible (TSD).
 
 

Transposons d'ADN couramment utilisés en laboratoire

Bien qu’il existe de nombreux types de transposons, les transposons d’ADN sont le plus souvent utilisés pour la manipulation du génome en laboratoire. Lors de l'utilisation de transposons en laboratoire, le gène de la transposase est fourni en trans pour insérer le gène cible entre les longues répétitions terminales (LTR) du transposon, similaire au processus d'empaquetage utilisé dans les vecteurs viraux.

Trois systèmes de transposons courants pouvant être utilisés comme outils de recherche sont Sleeping Beauty, PiggyBac et Tol2.
 
1. La Belle au bois dormant (SB)

La Belle au bois dormant est un élément synthétique transposable dérivé du marinier (S. marina). Sa cible d'intégration préférée est le dinucléotide TA. Après clivage par la transposase, il laisse une empreinte ADN CAG à l'extrémité du site d'excision. Sa capacité de chargement est >100 Ko, mais l'efficacité de l'intégration diminue avec la taille du chargement. La Belle au bois dormant s'intègre dans les génomes des mammifères avec des caractéristiques d'intégration quasi aléatoires. SB est actif chez les vertébrés et s'intègre dans les cellules humaines à un rythme similaire à celui des vecteurs rétroviraux. La version hautement active de la transposase SB, SB100X, offre une efficacité environ 100 fois supérieure à celle de la transposase SB de première génération. hySB100x est une amélioration par rapport au SB100X, offrant une augmentation de 30 % de l'activité de transposition.

2. piggyBac

PiggyBac, découvert dans Pieris rapae, cible le site TTAA. Contrairement aux autres transposons, il ne laisse aucune empreinte ADN après excision. piggyBac peut charger un ADN dépassant 100 kB et est actif dans les cellules de levure, de plantes, d'insectes et de mammifères (y compris humaines) in vitro et in vivo. piggyBac préfère l'intégration sur les sites d'initiation de la transcription, les îlots CpG et les sites hypersensibles à la DNase I. Comme la Belle au bois dormant, piggyBac s'intègre dans les cellules humaines avec une efficacité similaire à celle des vecteurs rétroviraux. Comparée à la transposase piggyBac de type sauvage optimisée pour les codons, la transposase PB hautement active (hyPB) présente une activité environ 10 fois plus élevée dans les cellules de mammifères.

3. Tol2

Tol2 a été le premier transposon d'ADN actif signalé chez les vertébrés. Il a été découvert chez le poisson medaka japonais, où l'insertion dans le gène de la tyrosinase a provoqué l'albinisme. Contrairement à Sleeping Beauty et piggyBac, le site d'intégration préféré de Tol2, TNA(C/G)TTATAA(G/C)TNA, a une séquence consensus plus faible. Tol2 peut délivrer 10 à 11 kB d'ADN dans les cellules de mammifères sans perte d'efficacité, avec une charge maximale d'environ 200 kB. Semblable à piggyBac, Tol2 préfère également l'intégration aux sites d'initiation de la transcription, aux îlots CpG et aux sites hypersensibles à la DNase I. Tol2 n'est actif que chez les vertébrés et son efficacité d'intégration dans les cellules humaines est inférieure à celle de PiggyBac et de Sleeping Beauty. Minimal Tol2, ou miniTol2, est une version tronquée du Tol2 original avec une activité de transposition environ trois fois supérieure.
 
 

Applications courantes

Écrans de mutagenèse de transposon

Les transposons sont intrinsèquement mutagènes, ce qui en fait d'excellents outils pour les tests de mutagenèse afin de détecter les mutations avec perte de fonction ou gain de fonction. Dans ces écrans, les transposons codent pour des gènes rapporteurs, des cassettes mutagènes ou des codes-barres. Lorsqu'ils sont livrés à des cellules ou à des organismes modèles, ils s'intègrent dans le génome hôte. Le séquençage de nouvelle génération est ensuite utilisé pour détecter les sites d'insertion de transposons, et une analyse est effectuée pour déterminer quelles insertions ont été sélectionnées positivement ou négativement au cours de l'expérience.

Animaux transgéniques

Les animaux transgéniques sont généralement générés en injectant de l'ADN directement dans le pronoyau des œufs fécondés, ce qui entraîne une intégration aléatoire de la séquence dans le génome, un processus hautement imprévisible. Cependant, les transposons peuvent s’intégrer efficacement dans le génome des œufs fécondés après injection dans le cytoplasme, un processus beaucoup moins efficace lorsque l’ADN est injecté directement. La Belle au bois dormant, piggyBac et Tol2 ont tous été utilisés pour générer des animaux transgéniques, notamment du poisson zèbre, des souris, des rats et des lapins.

Construction de lignées cellulaires stables

Les transposons sont une alternative aux vecteurs lentiviraux pour la construction de lignées cellulaires stables, comme pour la reprogrammation iPSC et la thérapie génique et cellulaire, et ils ont le potentiel de surmonter certaines des limites des virus. Les transposons (TE) ont des charges utiles importantes, atteignant jusqu'à 100 Ko en utilisant Sleeping Beauty et piggyBac, offrant un avantage significatif par rapport aux vecteurs viraux (les charges utiles AAV sont d'environ 5 Ko, tandis que les charges utiles lentivirales sont d'environ 8 Ko). Les transposons sont également moins susceptibles d’induire une réponse immunitaire que les vecteurs viraux et sont plus faciles et moins coûteux à produire. Les deux méthodes d'administration peuvent potentiellement provoquer une perturbation des gènes en raison de l'intégration, mais comme les ET s'insèrent principalement dans des régions intergéniques, la perturbation des gènes est moins préoccupante.

Transposition spécifique au site guidée par sgRNA

Les SgRNA peuvent être utilisés pour guider la transposition à un emplacement spécifique. Il a été rapporté que le système INTEGRATE (guide d'insertion ciblée d'éléments transposables assisté par ARN) permet d'atteindre une intégration d'environ 100 % de fragments d'ADN jusqu'à 10 kB dans les bactéries.

Services de construction de lignées cellulaires stables

CB-Gene fournit des services de développement de lignées cellulaires stables basés sur le « système d'intégration des transposons ». À ce jour, nous avons généré avec succès plus de 300 modèles de lignées cellulaires stables, démontrant une vaste expérience dans l'intégration du génome basée sur l'électroporation. Veuillez nous contacter pour discuter des exigences de votre projet.

 

 

PROJET Systèmes de transposon
Applicabilité cellulaire Presque toutes les lignées cellulaires
Efficacité élevée
Intégration aléatoire N
Niveau de biosécurité BL1
Capacité de transduction génique -
Taux positif après sélection élevé
Chronologie Synthèse génétique et construction plasmidique 4-5 semaines
Paquet de virus -
Sélection de cellules stables en pool 1-2 semaines
Cellule monoclonale facultatif
Total 5-7 semaines
Charge de travail faible


 

 

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Catégorie de produit

Norme d'intégration des lentivirus
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