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Définition

L'inactivation d'un gène fait référence à l'insertion d'un nouveau gène ou d'une nouvelle séquence d'ADN à un emplacement spécifique du génome. Ceci peut être réalisé grâce à la recombinaison homologue, aux vecteurs viraux ou à CRISPR/Cas9. L'inactivation génique médiée par recombinaison homologue nécessite l'introduction d'un fragment d'ADN modifié contenant la séquence génique souhaitée dans le site cible ; les vecteurs viraux, tels que les rétrovirus ou les virus adéno-associés (AAV), peuvent être utilisés pour introduire de nouveaux gènes dans le génome ; CRISPR/Cas9 peut également être utilisé pour insérer un gène en utilisant une matrice d'ADN de donneur ainsi que l'enzyme sgRNA et Cas9.
 

Principe d'activation du gène CRISPR-Cas9

Guidée par un ARN guide unique (sgRNA), l'endonucléase Cas9 induit une cassure double brin (DSB) au niveau d'un locus génomique spécifique. La cellule active ensuite la voie de réparation médiée par la recombinaison homologue. En présence d'une matrice d'ADN donneur hautement homologue, la séquence donneuse est utilisée pour réparer la cassure, permettant ainsi l'insertion précise du fragment d'ADN cible dans le génome à l'emplacement souhaité.

 
Lors de la réparation des DSB via HDR, le système de réparation cellulaire utilise un fragment exogène supplémentaire homologue des deux côtés de l’ADN cible comme modèle pour synthétiser une séquence génique complémentaire à la séquence homologue au niveau du DSB. Étant donné que le fragment exogène porte la mutation ou le gène cible à activer, il est possible d'introduire avec précision des mutations ponctuelles dans le génome ou d'insérer le gène cible.
 
 

Processus de service

Conception de vecteurs d'activation  : un vecteur d'activation approprié est d'abord conçu, tel qu'un plasmide, un vecteur viral ou une construction d'édition du génome guidée par ARN portant le gène cible ou la séquence modifiée. La conception du vecteur prend en compte la spécificité du gène cible, la longueur du bras d’homologie et la sélection du site d’intégration génomique approprié.
Processus de service actif
Transfection cellulaire : le vecteur knock-in modifié est introduit dans les cellules cibles à l'aide de méthodes telles que la transfection chimique, l'électroporation ou la transduction virale. L’optimisation des conditions d’administration est essentielle pour améliorer l’efficacité d’intervention et maintenir la viabilité cellulaire.
 

Criblage des lignées cellulaires knock-in : après la transfection ou la transduction, les cellules sont criblées pour identifier celles dont l'intégration génétique est réussie. Ceci est généralement réalisé à l'aide de marqueurs sélectionnables tels que des gènes de résistance aux antibiotiques, des rapporteurs fluorescents ou des tests de dépistage génétique.


Criblage monoclonal : le clonage unicellulaire est effectué pour garantir la clonalité, l'uniformité génétique et la stabilité de la lignée cellulaire knock-in. Les méthodes courantes incluent la dilution limitante, le tri de cellules uniques basé sur la cytométrie en flux ou la sélection de clones.

Vérification monoclonale : Les lignées cellulaires monoclonales knock-in établies sont en outre validées pour confirmer l'insertion correcte du gène et l'expression fonctionnelle. Les méthodes de vérification peuvent inclure la PCR, le séquençage, l'analyse de l'expression des protéines et les tests fonctionnels.
 

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