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Preguntas frecuentes

  • ¿Qué son los estándares de diagnóstico molecular?

    Los estándares/productos de control de calidad son esenciales para el control de calidad en cada etapa de las pruebas de diagnóstico molecular. Independientemente de la plataforma, ya sea NGS, QPCR o PCR digital, se confía en los estándares para evaluar la precisión y sensibilidad de los resultados de las pruebas.
    Como materiales de referencia precisos y estables con características bien definidas (como sitios de mutación conocidos y frecuencias de mutación), los estándares brindan seguridad a las empresas de DIV que desarrollan kits de prueba, laboratorios de diagnóstico molecular (LDT) internos y laboratorios de pruebas médicas (ICL) de terceros. Los centros de pruebas clínicas también utilizan estándares al realizar evaluaciones de calidad externas en sus centros de pruebas. Además, las empresas farmacéuticas también exigen normas para los diagnósticos complementarios durante el desarrollo de fármacos.
  • ¿Cuáles son los estándares de diagnóstico molecular de CB-Gene?

    Los estándares de diagnóstico molecular de CB-Gene se pueden clasificar en cinco áreas de aplicación:
    Oncología : 3S3P1O (Mutación/Fusión/CNV/Metilación/Panel/Par/Paquete/Otro);
    Patógenos : bacterias, virus y hongos comunes, como VHB, VPH y COVID-19;
    Metabolismo de fármacos : metabolismo del folato, warfarina, tamoxifeno, tacrolimus, etc.;
    Enfermedades Genéticas : Talasemia, sordera, AME, etc.;
    I+D de fármacos : estándares de sitios de integración lentivirales, estándares de residuos del huésped, etc.
  • ¿Qué formularios están disponibles para las normas?

    ADNg : ADN del genoma completo extraído de una línea celular con una mutación específica;
    ARN : ARN total extraído de una línea celular con una mutación específica;
    Pellet de células : Pellet de células con una mutación específica obtenida por centrifugación después del cultivo celular;
    ctDNA : fragmentos de ADN de 160 pb ± 10%, que simulan muestras de pacientes de biopsias líquidas; obtenidos mediante
    ① fragmentación ultrasónica de gDNA o
    ② digestión enzimática de cromosomas;
    Los fragmentos de ctDNA están disponibles como fragmentos purificados, o el ctDNA se puede disolver en plasma artificial en una concentración específica para simular muestras de plasma clínico no purificadas.
    Bloque FFPE : un número específico de células con una mutación específica se fijan con formalina y se incluyen en un bloque de parafina;
    Portaobjetos FFPE : un bloque de parafina integrado cortado en portaobjetos individuales;
    Otros : Solución bacteriana inactivada, virus inactivados, pseudovirus o matrices específicas (como suero, heces, etc.).
  • ¿Cuáles son las especificaciones del producto?

    La mayoría de los productos de ADNg , como Mutaion/Fusion/CNV/Metilación/Metabolismo de fármacos/Talasemia/Sordera/SMA, son de 1 μg/vial con una concentración de aproximadamente 40 ng/μl (ensayo Qubit).
    Los productos de ARN son 1 μg/vial con una concentración de aproximadamente 60 ng/μl (ensayo Nanodrop y Qubit). Las especificaciones
    de Cell Pellet se basan en recuentos de células, como 1x10e6 y 5x10e6.
    Para obtener información más detallada, visite nuestro sitio web oficial y catálogo de productos, o comuníquese con nuestro personal de ventas.
  • ¿Transporte, temperatura de almacenamiento y vida útil?

    Formato Temperatura de almacenamiento Fecha de expiración Método de envío
    ADNg 4 ℃ 3 años enviado en bolsas de hielo
    ARN -80°C 1 año enviado en hielo seco
    ADNtc -20°C 3 años enviado en hielo seco
    Pellet celular -80°C 3 años enviado en hielo seco
    FPE -20°C 3 años enviado en hielo seco

  • Los resultados de la prueba de FA no son los esperados. ¿Cuál es la razón?

    Puede haber muchas razones por las que los resultados de la prueba de FA no sean los esperados.
    Suelen existir las siguientes razones comunes:
    1) Diferencias en los aspectos metodológicos de la plataforma técnica. El valor de AF y el rango de error presentado por COA se basan en los resultados del cálculo cuantitativo absoluto de la PCR digital.
    Cuando el estándar se detecta mediante otras metodologías (como NGS), la desviación de AF puede amplificarse. Esta amplificación está relacionada con el tipo de mutación detectada, el número de copias y la especificidad de secuencia del gen diana, la ploidía cromosómica de la muestra, la ruta técnica experimental específica adoptada y el método de análisis bioinformático posterior. Específicamente, 1) Cuando la mutación es SNV, el valor de AF obtenido mediante PCR digital y NGS generalmente tiene una pequeña desviación, mientras que la desviación del valor de AF de CNV y mutaciones de fusión es grande. Desde una perspectiva experimental, la PCR digital es una amplificación y cuantificación de la muestra completa de ADNg, mientras que a menudo es necesario cortar la muestra durante el proceso de construcción de la biblioteca NGS. El corte generalmente facilita que la FA de CNV y las mutaciones de fusión se desvíen de la anterior al corte. A menudo observamos este fenómeno cuando utilizamos la PCR digital para detectar CNV y muestras de mutaciones de fusión antes y después del corte. También hemos encontrado esta diferencia después del corte en algunas muestras con ploidía cromosómica general anormal. Además, desde la perspectiva del análisis bioinformático posterior a la prueba, SNV Los métodos de cálculo y análisis de los valores de AF son relativamente maduros y unificados, y están más cerca de los principios de cálculo de los valores de AF de PCR digital. Por lo tanto, las diferencias entre los resultados de NGS y PCR digital suelen ser pequeñas. Sin embargo, el cálculo de FA de CNV y mutaciones de fusión depende más de algoritmos bioinformáticos. Los esquemas están menos unificados y maduros, y los algoritmos varían mucho de una empresa a otra. Esta es una de las razones de la gran diferencia entre este y el AF de calibración digital por PCR.

    Además, desde una perspectiva metodológica, la PCR digital es un método de PCR simple y de un solo disparo para la cuantificación absoluta. Los métodos NGS, ya sea que utilicen esquemas de amplicones o de captura, pueden implicar una PCR múltiple o múltiple durante la construcción y secuenciación de la biblioteca. Este proceso de PCR puede producir cierta amplificación sesgada, lo que provoca desviaciones en los valores de AF. También hemos verificado mediante experimentos de PCR digital que los valores de AF para los productos de PCR varían entre la construcción previa y posterior a la biblioteca para ciertas muestras y loci. Además, una profundidad de secuenciación NGS insuficiente o desigual también puede hacer que los valores de AF difieran de lo esperado. Por ejemplo, en sitios con contenido de GC alto o bajo, la profundidad de secuenciación puede ser desigual en comparación con otras regiones, lo que genera desviaciones de AF. Además, en sitios con una amplificación del número de copias alto, una profundidad de secuenciación insuficiente localizada puede dar como resultado que el límite superior de detección sea menor que el número de copias verdadero, lo que requiere una profundidad de secuenciación mayor para reflejar el número de copias verdadero.

    Estas son sólo algunas de las causas comunes de desviación de la FA. En general, las causas de las discrepancias en la FA son multifacéticas y complejas, y requieren un análisis específico de cada caso. Cuando nos encontramos con casos reales, es posible que necesitemos los datos originales del cliente y detalles experimentales para facilitar el análisis.
  • ¿Cómo se mide la frecuencia de mutación (FA)? ¿Cuál es el rango de error?

    La frecuencia de mutación AF del gen CB se detecta mediante PCR digital y el rango de error es el siguiente:

    DdPCR Criterios de aceptación
    Valor esperado Criterios de aceptación Valor esperado Criterios de aceptación
    0% ≤0,1% <5 copias Valor esperado ± 30%
    < 1% Valor esperado ± 50% ≥ 5 y <10 copias Valor esperado ± 20%
    ≥ 1% y <5% Valor esperado ± 30% ≥ 10 copias Valor esperado ± 15%
    ≥ 5% y <10% Valor esperado ± 20%

    ≥ 10% Valor esperado ± 10%


  • ¿Cómo se debe diluir el estándar? ¿Cómo se debe diluir la concentración?

    Dilución de la frecuencia de mutación de FA : el ácido nucleico de tipo salvaje de una línea celular sin una mutación se mezcla con ácido nucleico de una línea celular que contiene una mutación específica. La dilución de la frecuencia de mutación de la FA generalmente requiere algo más que simplemente considerar la proporción de masa de ácido nucleico de tipo salvaje a mutante. En cambio, se deben considerar múltiples factores, incluida la frecuencia original del locus de mutación, el número de copias del gen diana contenidas en los ácidos nucleicos mutantes y naturales, y el peso molecular genómico general (ploidía cromosómica) de las muestras de ácidos nucleicos mutantes y naturales. CB-Gene ha desarrollado un algoritmo único que incorpora todos estos factores en su cálculo, asegurando la proporción de mezcla teórica más precisa de ácido nucleico mutante y de tipo salvaje. Luego se realiza una PCR digital en la muestra diluida para una cuantificación absoluta. Luego, cualquier desviación del valor teórico de % de AF se ajusta y se repite mediante PCR digital para garantizar que el % de AF de la muestra diluida esté dentro del rango esperado.
    Dilución de la concentración : La concentración típica de ADNg es de 40 ng/ul. Si se requiere una concentración menor, el producto debe diluirse con el tampón adecuado.
  • ¿Existen mutaciones endógenas? ¿Cómo puedo obtener información relevante?

    Las líneas celulares de las que se derivan los estándares de CB-Gene contienen algunas mutaciones endógenas. Los resultados de la secuenciación del exoma completo de estas mutaciones se pueden obtener consultando a nuestro personal de ventas después de la compra.
  • ¿El producto es elegible para la aplicación? ¿Tiene licencia? ¿Cómo se puede rastrear la fuente? ¿Qué materiales se pueden proporcionar?

    Actualmente, los estándares de pruebas genéticas, especialmente los materiales de referencia de las empresas, se utilizan principalmente para el desarrollo metodológico y la verificación del rendimiento antes de las aplicaciones de ensayos clínicos de DIV. No están inherentemente involucrados en el proceso de solicitud. Siempre que la trazabilidad sea clara, todas las verificaciones de desempeño cumplan con las expectativas y los registros de datos sean completos, auténticos y precisos, se pueden incluir en la solicitud de aprobación del ensayo clínico.
    La trazabilidad de los materiales estándar (materiales de referencia) abarca mucho más que las materias primas; Abarca todo el proceso de producción. Es un proyecto sistemático que abarca, entre otros, el origen de las materias primas, los pasos del proceso de producción (extracción de muestras, dilución, calibración, etc.), el mantenimiento de registros de datos, el almacenamiento del producto y el transporte. CB-Gene se basa en los sistemas de calidad ISO9001 y 13485 y puede proporcionar materiales de trazabilidad claros, precisos y auténticos para cada etapa de la producción de múltiples materiales estándar.
  • ¿Cómo se preparan los estándares FFPE? ¿Cuáles son los formatos de producto, especificaciones y rendimientos de extracción? ¿Qué kits de extracción se recomiendan?

    Los estándares FFPE se preparan fijando con formalina un número específico de células con mutaciones específicas, incrustándolas en bloques de parafina y luego seccionando estos bloques en secciones de parafina.
    Equipos:
    Kit de tejido QIAamp DNA FFPE (Qiagen)
    Especificaciones del kit de ensayo Qubit dsDNA HS (Thermo Fisher Scientific)
    : Rendimiento de extracción: >400 ng por dos portaobjetos con 15 μm/portaobjetos
  • ¿Cómo se producen los estándares CB-Gene? ¿Cuáles son las diferencias entre las muestras clínicas y los estándares derivados de células? ¿Cuáles son sus ventajas?

    Aprovechando la biblioteca de CB-Gene de miles de muestras celulares, la base de datos de mutaciones genéticas y la tecnología de edición de genes, hemos desarrollado estándares para la extracción y calibración de líneas celulares tumorales comunes. La serie de ADN AI-Edigene® utiliza la edición de genes para modificar la secuencia de ácido nucleico de tipo salvaje a una mutación específica en una ubicación específica de un gen objetivo específico en el genoma. La serie de ARN AI-Edigene® utiliza expresión recombinante para introducir ADNc con una mutación específica (generalmente una mutación de fusión) en líneas celulares negativas, donde el ADNc introducido se transcribe en ARN con la mutación específica.
    Por ejemplo , considere extraer ADNg de una línea celular que ha sido editada para EGFR C797S (teóricamente, la edición en un cromosoma da como resultado una frecuencia de mutación del 50 %, mientras que la edición en ambos cromosomas da como resultado una frecuencia de mutación del 100 %). Luego se utiliza la secuenciación Sanger de próxima generación para verificar la presencia de la mutación y la PCR digital para cuantificar la frecuencia de la mutación. En comparación con las muestras clínicas, los estándares derivados de líneas celulares tienen las ventajas de ser reproducibles, estables en lotes, de bajo costo, rastreables y libres de controversias éticas médicas. En comparación con el ADN, los plásmidos, los productos de PCR, etc. sintetizados artificialmente, tienen secuencias completas de genoma o ARN y estructuras secundarias. Además de cambiar la secuencia de nucleótidos de la mutación objetivo, no aumentan, disminuyen ni cambian la secuencia y estructura general del cromosoma. Por tanto, son muy similares a las muestras clínicas.

  • ¿Cómo se deben utilizar los estándares y qué dosis se debe agregar cada vez? (Proporcione ejemplos para diferentes escenarios de aplicación).

    En términos generales, la cantidad de estándares utilizados está estrechamente relacionada con el escenario y la plataforma de la aplicación. Para NGS, por ejemplo, la entrada total para la mayoría de las pruebas de NGS suele estar entre decenas y 100-200 ng de ácido nucleico. Para la PCR cuantitativa o la PCR digital, la entrada suele ser de entre 10 y 10 ng. Además, la cantidad de estándares utilizados cada vez está estrechamente relacionada con el% de AF y el número de copias del gen objetivo que se está analizando. Cuando se espera que el % de AF o el número de copias sean bajos, puede ser necesario aumentar la dosis para aumentar la probabilidad de detección.
  • ¿Qué es un estándar de ctDNA? ¿Cómo está fragmentado? ¿Cómo interpreto los resultados del control de calidad? ¿Se realiza la reparación final después de la fragmentación?

    Los fragmentos de ADN de 160 pb ± 10 % simulan muestras líquidas de pacientes con biopsia. Estos fragmentos se obtienen mediante
    (1) fragmentación ultrasónica de ADNg o
    (2) extracción de cromosomas después de digestión enzimática.
    Proporcionamos fragmentos de ctDNA purificados. También podemos disolver ctDNA en una concentración específica en plasma artificial para simular muestras de plasma clínico no purificadas. Generalmente no brindamos servicios de reparación final para nuestros productos; Los clientes pueden realizar su propia reparación final según las necesidades de su aplicación.
  • ¿Cuál es el porcentaje de mutación del ADN estándar de fusión? ¿El ARN es ARN total? ¿Por qué existe una discrepancia significativa entre el ensayo del número de copias y la etiqueta COA?

    Con respecto al porcentaje de mutación del ADN estándar de fusión, normalmente diseñamos cebadores de sonda para la secuencia del punto de ruptura del gen objetivo y la región no mutada de todo el gen. Luego realizamos una PCR digital de mutación para medir el número de copias del punto de ruptura y del gen completo, respectivamente, para obtener una proporción.
    Los estándares de ARN que proporcionamos suelen ser ARN total de células que albergan una mutación de ARN específica. Los datos del número de copias de ARN generalmente están altamente correlacionados con los sistemas de transcripción inversa y PCR utilizados. Hemos comparado diferentes enzimas de transcripción inversa y PCR para el mismo locus y hemos encontrado diferencias significativas en el número de copias en algunos loci, a veces incluso de órdenes de magnitud. A pesar de esta variabilidad, cuando se diluyen en serie y se analizan utilizando el mismo sistema de transcripción inversa y PCR, la relación lineal entre el número de copias y la proporción de dilución es generalmente consistente con las expectativas. Además, para NGS, el número de copias normalmente se expresa como lecturas. Las diferencias en metodología y algoritmos bioinformáticos también pueden dar lugar a una variabilidad significativa en las copias resultantes.
  • ¿Cuáles son los componentes de las sondas cebadoras de PCR digitales? ¿Los cebadores son universales y las sondas están marcadas con diferentes fluoróforos?

    1) Las sondas cebadoras de PCR digitales se dirigen a SNV o indeles más cortos (p. ej., EGFR 19Del, 20Ins). Normalmente incluyen un par de cebadores y dos sondas marcadas con diferentes fluoróforos (p. ej., FAM/VIC, FAM/HEX, etc.) para identificar números de copias mutantes y de tipo salvaje.
    2) Las sondas cebadoras de PCR digitales se dirigen a las CNV. Normalmente incluyen dos pares de cebadores y dos sondas marcadas con diferentes fluoróforos (p. ej., FAM/VIC, FAM/HEX, etc.) para amplificar y cuantificar el número de copias del gen diana y del gen de referencia, respectivamente. (Los genes de referencia generalmente se seleccionan como genes relativamente conservadores que son menos susceptibles a la variación del número de copias, como RPP30. Aunque los genes de referencia son relativamente conservadores y menos susceptibles a las aberraciones del número de copias, esto no es absoluto. A veces, para mejorar la precisión de la detección, es aconsejable seleccionar dos o tres genes de referencia diferentes para comparar).
    3) Las sondas cebadoras de PCR digitales se dirigen a mutaciones de fusión de ADN y normalmente constan de dos pares de cebadores diferentes y dos sondas marcadas con diferentes fluoróforos (p. ej., FAM/VIC, FAM/HEX, etc.). Estos se utilizan para amplificar, identificar y cuantificar el número de copias del punto de interrupción del gen objetivo y el número total de copias del gen objetivo, respectivamente.
    4) Las sondas cebadoras de PCR digitales se dirigen al ARN y normalmente constan de un par de cebadores y una sonda marcada con un fluoróforo. Estos se utilizan para amplificar, identificar y cuantificar el número de copias del gen objetivo.
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